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Agar Mueller Hinton Frasco 500G AG-5033 Himedia

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Descrição Geral

AGAR MUELLER HINTON FRASCO 500G AG-5033 HIMEDIA


 

AG-5033 - O Ágar Mueller Hinton I, é recomendado para determinação da suscetibilidade de microrganismos a agentes antimicrobianos isolados de amostras clínicas.


Composição

  • Ingredientes Gms / Litro
  • Infusão HM B de # 300.000
  • Acicase ## 17.500
  • Amido 1.500
  • Ágar 17.000
  • PH final (a 25 ° C) 7,4 ± 0,1
  • Fórmula ajustada, padronizada para atender aos parâmetros de desempenho.
  • Equivalente à infusão de carne bovina de
  • Equivalente ao hidrolisado de caseína ácida


Instruções

  • Suspenda 38,0 gramas em 1000 ml de água destilada. Aqueça até ferver para dissolver completamente o meio. Esterilize em autoclave a pressão de 15 libras (121 ° C) por 15 minutos. Arrefecer até 45-50 ° C. Misture bem e despeje em placas de Petri estéreis.
  • Nota: O desempenho deste lote foi testado e padronizado de acordo com os protocolos M6 do documento CLSI (anteriormente, NCCLS) atual para avaliação do ágar Mueller Hinton desidratado.


Princípio e Interpretação

  • A formulação de Mueller Hinton foi originalmente desenvolvida como um meio de ágar simples e transparente para o cultivo de espécies patogênicas de Neisseria. Outros meios foram desenvolvidos posteriormente, substituindo o uso do ágar Mueller Hinton no cultivo de espécies patogênicas de Neisseria, mas se tornou amplamente utilizado na determinação da resistência às sulfonamidas dos gonococos e outros organismos. O ágar Mueller Hinton agora é usado como meio de teste para testes de susceptibilidade a antimicrobianos. Mueller Hinton Agar recomendado para a difusão de agentes antimicrobianos impregnados em disco de papel através de um gel de agar tal como descrito em CLSI Approved Standard. O Mueller Hinton Agar foi selecionado pelo CLSI por vários motivos:
  • Eu. Demonstra boa reprodutibilidade de lote para lote para testes suscetíveis.
  • É pobre em inibidores de sulfonamida, trimetoprim e tetraciclina.
  • Apoia o crescimento da maioria dos patógenos bacterianos não exigentes e
  • Muitos dados e muita experiência em relação ao seu desempenho foram registrados.
  • Kirby-Bauer et al recomendaram este meio para a realização de testes de suscetibilidade a antibióticos usando um único disco de alta concentração. O Comitê de Padronização da OMS para a padronização dos testes de suscetibilidade aceitou o ágar Mueller Hinton para determinar a suscetibilidade dos microrganismos devido à sua reprodutibilidade. O ágar Mueller Hinton com 5% de sangue de ovelha e o ágar Mueller Hinton com hemoglobina foram recomendados para testes de sensibilidade a antimicrobianos de Streptococcus pneumoniae e Haemophilus influenzae.
  • A infusão de HM B e a acicase fornecem compostos nitrogenados, carbono, enxofre e outros nutrientes essenciais. O amido atua como um colóide protetor contra substâncias tóxicas presentes no meio. A hidrólise do amido produz dextrose, que serve como fonte de energia. Estes ingredientes são selecionados para um baixo teor de timina e timidina, conforme determinado pelos valores de MIC para Enterococcus faecalis com sulfametoxazoletrimetoprim (SXT).O procedimento de Kirby-Bauer baseia-se na difusão em ágar de substâncias antimicrobianas impregnadas em discos de papel. Este método emprega discos com uma única concentração de agente antimicrobiano e os diâmetros de zona observados estão correlacionados com os valores de concentração inibitória mínima (CIM). Uma suspensão padronizada do organismo é esfregada em toda a superfície do meio. Os discos de papel impregnados com quantidades específicas de agentes antimicrobianos são então colocados na superfície do meio, incubados e as zonas de inibição ao redor de cada disco são medidas. A suscetibilidade é determinada pela comparação com os padrões CLSI.
  • Os vários fatores que influenciam os testes de suscetibilidade à difusão de disco são profundidade do ágar, potência do disco, concentração do inóculo, pH do meio e produção de beta-lactamase pelos organismos testados. O Ágar Mueller Hinton não é apropriado para o ensaio pelo método de difusão em disco com organismos de crescimento lento, anaeróbios e capnófilos. Com organismos de crescimento lento, o aumento da incubação pode causar deterioração do antibiótico difuso e produzir leituras imprecisas.


Organismo:Escherichia coli ATCC 25922 (00013*)


Crescimento: Exuberante
 

  • ATB: Cefalotina CEP 30mcg
  • Zona Padrão: 29-37mm
  • Zona de Inibição Observada: 29-37mm

 

  • ATB: Cloranfenicol C 30mcg
  • Zona Padrão: 21-27mm
  • Zona de Inibição Observada: 21-27mm

 

  • ATB: Co-Tricomoxazole COT 25mcg
  • Zona Padrão: 23-29mm
  • Zona de Inibição Observada: 23-29mm

 

  • ATB:Cefotaxime CTX 30mcg
  • Zona Padrão: 29-35mm
  • Zona de Inibição Observada: 29-35mm

 

  • ATB:Gentamicina GEN 10mcg
  • Zona Padrão: 19-26mm
  • Zona de Inibição Observada: 19-26mm

 

  • ATB:Sulfafurazole SF 300mcg
  • Zona Padrão: 15-23mm
  • Zona de Inibição Observada: 15-23mm


Organismo: Staphylococcus aureus subsp. aureus ATCC 25923 (00034*)


Crescimento: Exuberante
 

  • ATB:Co-Trimoxazole COT 25mcg#
  • Zona Padrão: #20 mm
  • Zona de Inibição Observada: (Clear >=20 mm zone)

 

  • ATB: Cefoxitin CX 30mcg
  • Zona Padrão: 23-29mm
  • Zona de Inibição Observada: 23-29mm

 

  • ATB: Erythromycin E 15mcg
  • Zona Padrão: 22-30mm
  • Zona de Inibição Observada: 22-30mm

 

  • ATB: Linezolid LZ 30mcg
  • Zona Padrão: 25-32mm
  • Zona de Inibição Observada: 25-32mm

 

  • ATB: Oxacilina OX 1mcg
  • Zona Padrão: 18-24mm
  • Zona de Inibição Observada: 18-24mm

 

  • ATB: Pristinomycin RP 15mcg
  • Zona Padrão: 21-28mm
  • Zona de Inibição Observada: 21-28mm

 

  • ATB: Tetraciclina TE 30mcg
  • Zona Padrão: 18-25mm
  • Zona de Inibição Observada: 18-25mm

 

  • ATB: Ciprofloxacino CIP 5mcg
  • Zona Padrão: 22-30mm
  • Zona de Inibição Observada: 22-30mm


Organismo

  • Pseudomonas aeruginosa ATCC 27853 (00025*)
  • Crescimento: Exuberante

 

  • ATB: Ceftazidime CAZ 30mcg
  • Zona Padrão: 22-29mm
  • Zona de Inibição Observada: 22-29mm

 

  • ATB: Ciprofloxacin CIP 5mcg
  • Zona Padrão: 30-40mm
  • Zona de Inibição Observada: 30-40mm

 

  • ATB: Tobramycin TOB 10mcg
  • Zona Padrão: 19-25mm
  • Zona de Inibição Observada: 19-25mm

 

  • ATB: Amikacin AK 30mcg
  • Zona Padrão: 18-26mm
  • Zona de Inibição Observada: 18-26mm

 

  • ATB: Aztreonam AT 3mcg
  • Zona Padrão: 23-29mm
  • Zona de Inibição Observada:23-29mm

 

  • ATB: Cephotaxime CTX 30mcg
  • Zona Padrão: 18-22mm
  • Zona de Inibição Observada: 18-22mm

 

  • ATB: Gentamicin GEN 10mcg
  • Zona Padrão: 16-21mm
  • Zona de Inibição Observada:16-21mm

 

  • ATB: Imipenem IPM 10mcg
  • Zona Padrão:20-28mm
  • Zona de Inibição Observada: 20-28mm

 

  • ATB: Piperacillin PI 100mcg
  • Zona Padrão:12-18mm
  • Zona de Inibição Observada:25-33mm


Organismo

  • Escherichia coli ATCC 35218
  • Crescimento: Exuberante

 

  • ATB: Amoxyclav AMC 30mcg
  • Zona Padrão: 18-24mm
  • Zona de Inibição Observada: 18-24mm

 

  • ATB: Piperacillin/Tazobactam PIT100/10 mcg
  • Zona Padrão: 24-30mm
  • Zona de Inibição Observada:24-30mm

 

  • ATB: Ticarcillin TI 75mcg
  • Zona Padrão: 6mm
  • Zona de Inibição Observada: 6-6mm

 

  • ATB: Ticarcillin/Clavulanic acid TCC 75/10mcg
  • Zona Padrão: 20-28mm
  • Zona de Inibição Observada: 20-28mm

 

  • ATB: Ampicillin AMP 10 mcg
  • Zona Padrão: 16-22mm
  • Zona de Inibição Observada:16-22mm

 

  • ATB: Ampicillin/Sulbactam A/S 10/10 mcg
  • Zona Padrão: 29-37mm
  • Zona de Inibição Observada: 29-37mm



Organismo

  • Enterococcus faecalis ATCC 29212 (00087*)
  • Crescimento: Exuberante

 

  • ATB: Trimethoprim TR 5mcg#
  • Zona Padrão: #20mm
  • Zona de Inibição Observada: >=20mm

 

  • ATB: Vancomycin VA 30mcg
  • Zona Padrão: 17-21mm
  • Zona de Inibição Observada: 17-21mm


Organismo

  • Staphylococcus aureus subsp. aureus ATCC 43300 (MRSA) (00211*)
  • Crescimento: Exuberante
  • ATB: Oxacilina OX 1mcg
  • Zona Padrão:Zona muito turva a nenhuma
  • Zona de Inibição Observada: Nenhuma Zona


Armazenamento e prazo de validade

  • Armazenar entre 10-30°C em um recipiente bem fechado e o meio preparado a 20-30°C. Use antes da data de validade no rótulo. Na abertura, o produto deve ser adequadamente armazenado seco, após fechar firmemente o frasco para evitar a formação de caroços devido à natureza higroscópica do produto. O armazenamento inadequado do produto pode levar à formação de caroços. Armazenar em área ventilada seca e protegida de temperaturas extremas e fontes de ignição. Fechar o recipiente firmemente após o uso. Use antes da data de validade no rótulo. O desempenho do produto é melhor se usado dentro do prazo de validade indicado.


Descarte

  • O usuário deve garantir o descarte seguro por autoclave e / ou incineração de preparações usadas ou não utilizáveis deste produto. Siga os procedimentos laboratoriais estabelecidos ao descartar materiais infecciosos e o material que entrar em contato com a amostra clínica deve ser descontaminado e descartado de acordo com as técnicas laboratoriais atuais.


Referências

  • 1. Mueller J. H. e Hinton J., 1941, Proc. Soc. Exp. Biol. Med. 48: 330.
  • 2. Comitê Nacional de Padrões Laboratoriais Clínicos, 2000, Norma Aprovada: M7-A5. Métodos de diluição
  • Testes de Susceptibilidade Antimicrobiana para Bactérias que crescem aerobicamente, 5ª Ed., NCCLS, Wayne, Pa.
  • 3. Norma aprovada pela NCCLS: ASM-2, 1979, Padrões de desempenho para testes de susceptibilidade a discos antimicrobianos, 2ª Ed.,
  • Comitê Nacional para Clin. Lab. Padrões.
  • 4. Bauer A. W., Kirby W. M., Sherris J. L. e Turck M., 1966, Am. J. Clin. Pathol., 45: 493.
  • 5. Status atual e trabalho futuro, estudo colaborativo patrocinado pela OMS, Chicago, outubro de 1967.
  • 6. Ericsson H. M. e Sherris J. L., 1971, Acta Pathol. Microbiol., Scand. Seção B Supl., 217: 1.
  • 7. Comitê Nacional de Padrões de Laboratórios Clínicos, 1986, Padrões Propostos, M6-P, NCCLS, Villanova, Pa.
  • 8. MacFaddin J. F., 1985, Media para Isolamento-Cultivo-Identificação-Manutenção de Bactérias Médicas, vol. 1, Williams e Wilkins, Baltimore
  • 9. Murray P.R., Baron J.H., Pfaller M.A., Jorgensen J.H. e Yolken R.H., (Ed.), 2003, Manual of Clinical Microbiology, 8a Ed., American Society for Microbiology, Washington, D.C.
  • 10.Isenberg, H.D. Procedimentos Clínicos de Microbiologia. 2ª Edição.
  • 11. Jorgensen, J. H., Pfaller, M.A., Carroll, K.C., Funke, G., Landry, M. L., Richter, S. S. e Warnock., D.W. (2015) Manual de Microbiologia Clínica, 11ª Edição. Vol. 1
Ficha técnica
Código AG-5033
Categoria AGAR(MEIO DE CULTURA)
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