Agar Infusao Cerebro E Coraçao Bhi Com 1% De Agar Frasco 500g AG-5026 Himedia

AGAR INFUSAO CEREBRO E CORAÇAO BHI COM 1% DE AGAR FRASCO 500G AG-5026 HIMEDIA

Composição**

• Ingredientes Gms / Litro
• Pó de infusão de HM # 12.500
• BHI em pó## 5.000
• Peptona protéica 10.000
• Dextrose (Glicose) 2.000
• Cloreto de sódio 5.000
• Fosfato dissódico 2.500
• Ágar 10.000
• PH final (a 25 ° C) 7,4 ± 0,2

** Fórmula ajustada, padronizada para atender aos parâmetros de desempenho
# Equivalente à infusão cerebral de bezerro
## Equivalente à infusão coração de boi

Instruções
Suspenda 52,0 gramas em 1000 ml de água destilada. Aqueça até ferver para dissolver completamente o meio. Esterilizar em autoclave a 15 libras de pressão (121°C) por 15 minutos. Arrefecer até 45-50°C. Misture bem e despeje em placas de Petri estéreis. Se desejar, podem ser adicionadas unidades de penicilina e 40 µg de estreptomicina por ml de meio para tornar o meio seletivo para fungos.

Princípio e Interpretação
O ágar para infusão cerebral do coração é altamente nutritivo e pode suportar um crescimento exuberante de uma grande variedade de microorganismos. Pode ser enriquecido pela adição de sangue ou tornado seletivo pela adição de diferentes antibióticos (1, 2). É um propósito geral meio usado para isolamento primário de bactérias aeróbicas de amostras clínicas. Adição de 50 mg/ l de cloranfenicol ou Estreptomicina 40 mg/ l ou uma mistura de 50 mg / l de gentamicina e 50 mg/ l de cloranfenicol juntamente com 5-10% de desfibrinado estéril o sangue é frequentemente recomendado para inibição de bactérias e isolamento de fungos sistêmicos patogênicos. Também é utilizada uma mistura de ciclo-heximida (0,5 g/l) e cloranfenicol (0,05 g/l) para isolamento seletivo de fungos patogênicos (incubação a 25-30°C por 1-2 semanas) (3). Alguns fungos podem ser inibidos neste meio com 10% de sangue de ovelha, gentamicina e cloranfenicol (4-6).
A peptona protéica e as infusões usadas na mídia servem como fontes de carbono, nitrogênio, vitaminas, aminoácidos, juntamente com fatores de crescimento essenciais. Dextrose é a fonte de energia. O cloreto de sódio mantém o equilíbrio osmótico do meio enquanto o fosfato dissódico protege o meio. O sangue desfibrinado de ovelha adicionado ao meio basal fornece fatores de crescimento para os organismos fúngicos mais exigentes.

Tipo de amostra
Amostras clínicas - sangue

Coleta e manuseio de amostras
Para amostras clínicas, siga as técnicas apropriadas para o manuseio de amostras, conforme diretrizes estabelecidas (7,8). Após o uso, os materiais contaminados devem ser esterilizados em autoclave antes de serem descartados.

Aviso e Precauções
Apenas para diagnóstico in vitro. Leia o rótulo antes de abrir o recipiente. Usar luvas de proteção/vestuário de proteção/olhos proteção/proteção facial. Siga as boas práticas de laboratório microbiológico ao manusear amostras e cultura. Precauções Padrão de acordo com as diretrizes estabelecidas devem ser seguidas durante o manuseio de amostras clínicas. As diretrizes de segurança podem ser referidas nas fichas de dados de segurança individuais.

Limitações
1. Como os organismos diferem em suas necessidades nutricionais, alguns organismos exigentes podem ser inibidos ou mostrar-se deficientes crescimento.
2. Testes bioquímicos adicionais devem ser realizados para identificação completa.

Desempenho e Avaliação
A performance do meio é esperada quando usada conforme a direção na etiqueta dentro do prazo de validade quando armazenada em temperatura recomendada.

Controle de qualidade
Aparência: Creme para amarelar pó homogêneo de fluxo livre
Gelificação: Firme, comparável com gel de ágar a 1,5%
Cor e clareza do meio preparado: Meio basal: gel de cor âmbar clara, clara a ligeiramente opalescente. Após adição de 5% v / v de sangue desfibrinado estéril: Formas de gel opacas e de cor vermelho cereja, em placas de Petri.
Reação: Reação de solução aquosa a 5,2% p/v a 25°C. pH: 7,4 ± 0,2
pH: 7,20-7,60

Resposta cultural
Características culturais observadas após uma incubação a 35-37°C por 18-24 horas (se desejado, adicione 5% v/v desfibrinado estéril sangue).

Resposta cultural

Organismo: Candida albicans ATCC 26790
Inoculação: 50-100
Crescimento:Exuberante
Recuperação:>=70%
Crescimento com sangue: Exuberante
Recuperação com sangue:>=70%

Organismo: Staphylococcus aureus ATCC 25923
Inoculação:50-100
Crescimento:Exuberante
Recuperação: >=70%
Crescimento com sangue: Exuberante
Recuperação com sangue: >=70%

Organismo: Streptococcus pneumoniae ATCC 6303
Inoculação:50-100
Crescimento: Exuberante
Recuperação:>=70%
Crescimento com sangue: Exuberante
Recuperação com sangue:>=70%

Organismo: Shigella flexneri ATCC 12022 (00126*)
Inoculação: 50-100
Crescimento:Exuberante
Recuperação:>=70%
Crescimento com sangue:Exuberante
Recuperação com sangue: >=70%

Organismo:Escherichia coli ATCC 25922 (00013*)
Inoculação:50-100
Crescimento: Exuberante
Recuperação:>=70%
Crescimento com sangue: Exuberante
Recuperação com sangue: >=70%

Armazenamento e prazo de validade
Armazenar abaixo de 30°C em um recipiente bem fechado e o meio preparado a 2-8°C. Use antes da data de validade no rótulo. Em abertura, o produto deve ser adequadamente armazenado seco, depois de fechar firmemente a garrafa, a fim de evitar a formação de caroços devido à natureza higroscópica do produto. O armazenamento inadequado do produto pode levar à formação de caroços. Armazenar em área ventilada seca protegido de temperaturas extremas e fontes de ignição. Feche o recipiente firmemente após o uso. Use antes da data de validade no rótulo. O desempenho do produto é melhor se usado dentro do prazo de validade indicado.

Descarte
O usuário deve garantir o descarte seguro por autoclave e / ou incineração de preparações usadas ou não utilizáveis deste produto. Segue procedimentos laboratoriais estabelecidos na eliminação de materiais infecciosos e materiais que entram em contato com a amostra deve ser descontaminada e descartada de acordo com as técnicas laboratoriais atuais (7,8).

Referências:
1. Roseburg T. et ai., 1944, J. Infect. Dis., 74: 131.
2. Conant N. F., 1950, Diagnostic Procedures and Reagents, 3ª Ed., APHA Inc.
3. MacFaddin J. F., 1985, Media para Isolamento-Cultivo-Identificação-Manutenção de Bactérias Médicas, vol. Eu Williams e Wilkins, Baltimore.
4. Creitz e Puckett, 1954, alt. J. Clin. Pathol., 24: 1318.
5. Murray P. R., Barão J. H., Pfaller M. A., Jorgensen J. H. e Yolken R. H., (Eds.), 2003, Manual of Clinical Microbiology,
8a Ed., Sociedade Americana de Microbiologia, Washington, D.C.
6. Ajello L., Georg L., Kaplan W. e Kaufman L., 1963, Manual do Laboratório CDC de Micologia Médica, Publicação PHS No. 994, U.S. Govt. Escritório, Washington, D.C.
7. Isenberg, H.D. Procedimentos Clínicos de Microbiologia. 2ª Edição.
8. Jorgensen, J. H., Pfaller, M.A., Carroll, K.C., Funke, G., Landry, M. L., Richter, S. S. e Warnock., D.W. (2015) Manual de Microbiologia Clínica, 11ª Edição. Vol. 1