Agar Base Perfringens Tsc/Sfp Frasco 500G AG-5017 Himedia

AGAR BASE PERFRINGENS TSC/SFP FRASCO 500G AG-5017 HIMEDIA

AG-5017 - Perfringens Agar Base (T. S. C. /S. F. P. Agar Base) - M837

O Ágar Base Perfringens (TSC/SFP) com adição de suplemento seletivo e enriquecimento é utilizado para a identificação presuntiva e enumeração de Clostridium perfringens a partir de alimentos.

Composição

• Ingredientes Gms / Litro
• Triptose 15.000
• Extrato de carne 5.000
• Digestão papaica da farinha de soja 5.000
• Extrato de levedura 5.000
• Metabissulfito de sódio 1.000
• Citrato de amônio férrico 1.000
• Ágar 15.000
• PH final (a 25 ° C) 7,6 ± 0,2
• ** Fórmula ajustada, padronizada para atender aos parâmetros de desempenho.

Instruções

• Suspenda 23,5 gramas em 475 ml de água destilada. Aqueça até ferver para dissolver completamente o meio. Esterilizar em autoclave a 15 libras de pressão (121 °) por 15 minutos. Arrefecer até 50 ° C. Adicione 25 ml de emulsão de gema de ovo (FD045) e o conteúdo reidratado de 1 frasco de S.F.P. Suplemento (FD013) / T.S.C. Suplemento (FD014). Alternativamente, se a detecção fluorogênica for desejada, adicione conteúdo reidratado dos suplementos de Clostridium perfringens (FD243) em vez de FD013 / FD014. Misture bem antes de despejar placas de Petri estéreis.

Princípio e Interpretação

• O Ágar de triptose sulfito-cicloserina (TSC) foi originalmente formulado por Harmon et al (1) para a enumeração de C.perfringens de comida. O TSC Agar foi documentado como um dos meios mais úteis para a recuperação quantitativa de C. perfringens enquanto suprime o crescimento de outros anaeróbios facultativos (2). A base de ágar Perfringens também é recomendada pela APHA (3). A base de ágar Perfringens pode ser seletiva por adição de D-cicloserina (FD014) (1, 2) ou Kanamicina e Polimixina B (FD013) (4). O TSC Agar Base (com FD014) ou SFP Agar Base (com FD013) é comparável em desempenho para isolamento de C. perfringens (5, 6). Triptose, digestão papaica da farinha de soja, extrato de levedura, extrato de carne bovina fornecem compostos nitrogenados, carbono, enxofre, vitamina Complexo B e oligoelementos essenciais para o crescimento clostridial. O metabissulfito de sódio e o citrato de amônio férrico atuam como indicador de redução de sulfito, indicado por colônias de cor preta. D-Cicloserina (FD014), Kanamicina e Polimixina B (FD013) ajudam no isolamento seletivo de C.perfringens, inibindo a flora associada. A emulsão de gema de ovo serve como fonte de lecitina utilizada por C.perfringens (M837).

Tipo de amostra

• Clínica - fezes, abscesso; Amostras de alimentos

Controle de qualidade

• Aparência: Pó de fluxo livre homogêneo amarelo claro a amarelo acastanhado
• Gelificação: Firme, comparável com gel de ágar a 1,5%
• Cor e clareza do meio preparado: Meio basal: Gel de cor âmbar claro a levemente opalescente. Após a adição de emulação de gema de ovo (FD045): Amarelo formas de gel opaco colorido em placas de Petri
• Reação: Reação de solução aquosa a 4,7% p / v a 25 ° C. pH: 7,6 ± 0,2
• pH: 7,40-7,80

Resposta cultural

• Características culturais observadas em condições anaeróbias com o suplemento TSC adicionado (FD014) / suplemento S.P.P (FD013) / Clostridium Perfringens Supplement (FD243) e emulsão de gema de ovo (FD045), após uma incubação a 35-37 ° C por 18-24 horas.

Organismo

• Clostridium perfringens ATCC 12924
• Inoculação: 50-100
• Crescimento: Exuberante
• Recuperação: >=50%
• Redução Sulfito: positivo, escurecimento do meio
• Lecitinase/Círculo: Reação Positiva,zona opaca em volta da colônia
• Fluorescência: Reação Positiva

Organismo

• Clostridium sordellii ATCC 9714
• Inoculação: >=10³
• Crescimento: Inibido
• Recuperação: 0%
• Redução Sulfito: -
• Lecitinase/Círculo: -
• Fluorescência: -

Armazenamento e prazo de validade: Armazenar abaixo de 30°C em recipiente bem fechado e o meio preparado a 2-8°C. Use antes da data de validade no rótulo.

Referências
1. Harmon S.M., Kauttar D.A. e Peiler J. T., 1971, Appl. Microbiol., 22: 688.
2. Harmon S. M. e Kautter D.A., 1987, J. Asso. Fora. Anal. Chem., 70: 994.
3. Downes F.P. e Ito K., (Eds.), 2001, Compêndio de Métodos para o Exame Microbiológico de Alimentos, 4ª Ed., Associação Americana de Saúde Pública, Washington, D.C.
4. Shahidi S. A. e Ferguson A. R., 1971, Appl. Microbiol., 21.500
5. Horwitz, (Ed.), Métodos Oficiais de Análise da AOAC International, 17ª Ed., AOAC International, Gaithersburg, Maryland.
6. MacFaddin J. F., 1985, Media para Isolamento-Cultivo-Identificação-Manutenção de Bactérias Médicas, vol. 1, Williams e Wilkins, Baltimore.